Шпоры

 «РПГА при определении HBs антигена вируса гепатита В»

Шаг 1

Приготовить рабочее разведение исследуемой сыворотки 1:5 : в стерильную пробирку градуированной пипеткой внести 1 мл исследуемой сыворотки и 4 мл стерильного физиологического раствора, перемешать пипетированием

Шаг 2

В 6 лунок внести физиологический раствор 1 мл и отдельно в 2 лунки для контролей

Шаг 3

Градуированной пипеткой набрать 1 мл из разведения 1:5 и внести в 1-ую лунку перемешать пипетированием. Над лункой подписать разведение 1:10

Шаг 4

Взять новую градуированную пипетку, набрать 1 мл смеси из 1-ой лунки и внести во 2-ую лунку перемешать пипетированием. Над лункой подписать разведение 1:20.

Шаг5

Взять новую градуированную пипетку, набрать 1 мл смеси из 2-ой лунки и внести во 3-ю лунку перемешать пипетированием. Над лункой подписать разведение 1:40.

Шаг 6

Взять новую градуированную пипетку, набрать 1 мл смеси из 3-ей лунки и внести во 4-ю лунку перемешать пипетированием. Над лункой подписать разведение 1:80.

Шаг 7

Взять новую градуированную пипетку, набрать 1 мл смеси из 4-ой лунки и внести во 5-ю лунку перемешать пипетированием. Над лункой подписать разведение 1:160.

Шаг 8

Взять новую градуированную пипетку, набрать 1 мл смеси из 5-ой лунки и внести во 6-ую лунку перемешать пипетированием. Над лункой подписать разведение 1:320.

Шаг9

Взять новую градуированную пипетку, набрать 1 мл рабочего разведения сыворотки 1:5 внести в 1-ую контрольную лунку перемешать пипетированием

Шаг10

Взять новую градуированную пипетку, внести в каждую лунку по 0,5 мл взвеси эритроцитарного антительного HBs-диагностикума, кроме контрольных.

Шаг 11

Взять новую градуированную пипетку, набрать 0,5 мл взвеси  эритроцитарного антительного HBs-диагностикума внести в 2-ую контрольную лунку перемешать пипетированием с физиологическим раствором

Шаг 12

Инкубирование в термостате при 37˚С 60 мин.

Шаг 13

Учет результатов: при положительной реакции на дне лунок образуется мелкозернистый осадок по всей поверхности в виде «зонтика». При отрицательном результате осадок с ровными краями, в виде «пуговки»

                                                                                                                                                                  «МИКРОСКОПИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ»

Шаг 1

на приготовленный и окрашенный мазок на предметном стекле нанести каплю иммерсионного масла и поместить его на предметный столик, укрепив зажимами;

Шаг 2

повернуть револьвер до отметки иммерсионного объектива Х100;

Шаг 3

осторожно опустить тубус микроскопа до погружения объектива в каплю масла;

Шаг 4

установить ориентировочный фокус при помощи макрометрического винта;

Шаг 5

провести окончательную фокусировку препарата микроскопическим винтом, вращая его в пределах только одного оборота.

«Развернутая реакция агглютинации при бруцеллезе (Реакция Райта)»

Шаг 1

Внести в штатив в один ряд 5 стерильных серологических пробирок и отдельно еще 2 пробирки для контроля реакции. Пронумеровать пробирки 1-5, контрольная №1 – КС (контроль сыворотки), контрольная №2 – КАг (контрольная антигена).

Шаг 2

Внести во все пробирки, кроме контроль №1 – КС, 0,5 мл стерильного физиологического раствора.

Шаг 3

Из сыворотки больного готовят рабочее разведение сыворотки – 1:25. Для этого в пробирку вносят 24 мл физиологического раствора + 1 мл сыворотки больного.

Шаг 4

В 1-ую пробирку добавляют к 0,5 мл физиологического раствора 0,5 мл рабочего разведения сыворотки (1:25), тщательно перемешивают пипетированием. Подписывают разведение 1:50.

Шаг 5

Новой пипеткой из 1-ой пробирки раствор переносят во 2-ую пробирку тщательно перемешивают пипетированием. Подписывают разведение 1:100.

Шаг 6

Новой пипеткой из 2-ой пробирки раствор переносят в 3-ю пробирку тщательно перемешивают пипетированием. Подписывают разведение 1:200.

Шаг 7

Новой пипеткой из 3-й пробирки раствор переносят в 4-ю пробирку тщательно перемешивают пипетированием. Подписывают разведение 1:400.

Шаг 8

Новой пипеткой из 4-ой пробирки раствор переносят в 5-ю пробирку тщательно перемешивают пипетированием. Снова набирают 0,5 мл из 5-й пробирки и выливают в дезинфицирующий раствор Подписывают разведение 1:800.

Шаг 9

Ампулу с диагностическим антигеном вскрывают, во все пробирки, кроме контроль №1 – КС (контроль сыворотки) вносят по 3 капли диагностического бруцеллезного антигена.

Шаг 10

Перемешать  встряхивая штатив

Шаг 11

Инкубация в термостате при температуре 37˚С 2 часа

Шаг 12

Учет результатов реакции агглютинации: при положительной реакции на дне пробирки проявляется осадок (комплексы антиген+антитело), при отрицательном результате во всех пробирках жидкость прозрачная. Все контроли должны быть отрицательными. Титр антител – последнее разведение в ряду пробирок, дающее положительный результат.

 «Реакция связывания комплемента (РСК) – реакция Вассермана»

Шаг 1

Подготовить ингредиенты реакции: антиген 1 – неспецифический антиген (липиды из мышцы сердца быка), 2 и 3 – специфические антигены трепонемы, инактивированная исследуемая сыворотка, изотонический раствор хлорида натрия, комплемент в рабочей дозе, гемолитическая система и пронумеровать 4 пробирок (1-я, 2-я, 3-я, 4-я (контроль)).

Шаг 2

Внесение исследуемой сыворотки во все пробирки по 0,1 мл.

Шаг 3

Внесение изотонического раствора натрия хлорида по 0,4  мл в 1-, 2- и 3-ю пробирки и по 0,9 мл в 4-ю пробирку.

Шаг 4

Внесение 0,5 мл неспецифического антигена 1 в 1-ю  пробирку

Шаг 5

Внесение 0,5 мл специфического антигена 2 во 2-ю пробирку

Шаг 6

Внесение 0,5 мл специфического антигена 3 во 3-ю пробирку

Шаг 7

Внесение комплемента по 0,5 мл во все пробирки, гомогенизировать.

Шаг 8

Инкубация в термостате при 370С в течение 45 мин.

Шаг 9

Добавление гемолитической системы по 1,0 мл во все пробирки. Встряхивают и выдерживают 40-60 мин при 370С в термостате

Шаг 10

Учет результатов. В первых трех пробирках «положительная реакция» +++ – полная задержка гемолиза (жидкость в пробирке бесцветна и эритроциты оседают на дно. «отрицательная реакция» «-» – гемолиз (полный лизис эритроцитов, жидкость окрашена (лаковая кровь)).

 «Реакция иммунофлюоресценции (РИФ) при диагностике хламидийной инфекции»

 

Шаг 1

На поверхности обезжиренного стекла карандашом нарисовать кружок диметром 15-20 мм

Шаг 2

В центр кружочка вносят материал больного петлей круговыми движениями.Бактериологическую петлю простерилизовать, поставить в штатив.

Шаг 3

Мазок подсушивают над пламенем горелкив теплой струе воздуха до полного высыхания

Шаг 4

На подсушенный мазок вносят 2-3 капли диагностической сыворотки против хламидий

Шаг 5

Инкубация в влажной камере в термостате при 37˚С 30 мин

Шаг 6

Промывают препарат промывочным раствором

Шаг 7

На мазок вносят 2-3 капли антивидовой флюоресцирующей сыворотки

Шаг 8

Инкубация в термостате при 37˚С 30 мин

Шаг 9

Промывают препарат промывочным раствором

Шаг 10

Вносят 1 каплю иммерсионного масла, микроскопируют.

Учет результатов: при положительном результате в мазке будет обнаруживаться зеленовато желтое свечение на темном фоне. При отрицательной реакции все поля зрения при микроскопии будут темными без свечения.

«ИФА – определение антител против ВИЧ»

Шаг 1

В три лунки микропланшета внести исследуемую сыворотку

Шаг 2

В следующий ряд в три лунки внести сыворотку с антителами к ВИЧ (положительный контроль)

Шаг3

В следующий ряд в три лунки внести сыворотку без антител к ВИЧ (отрицательный контроль)

Шаг 4

Инкубация в термостате при 37ºС в течение 1 часа

Шаг 5

Промыть все лунки промывочным раствором 5 раз

Шаг 6

Внести во все лунки антиглобулиновую сыворотку, меченную ферментом пероксидазой (конъюгат)

Шаг 7

Инкубация в термостате при 37ºС в течение 1 часа

Шаг 8

Промыть все лунки промывочным раствором 5 раз

Шаг 9

Внести во все лунки субстрат для фермента пероксидазы – хромоген

Шаг 10

Инкубация в термостате при 37ºС в течение 30минут

Шаг 11

Внести во все лунки стоп реагент

Шаг 12

Анализ оптической плотности раствора в микропланшетев считывающих аппаратах – риддеры. При положительной реакции раствор в лунках окрашивается в желтый цвет, при отрицательной реакции – бесцветная. Окончательные результаты выдает риддер – цифровые показатели оптической плотности раствора в лунках

          «ПОСТАНОВКА АЛЛЕРГИЧЕСКОЙ ПРОБЫ В ДИАГНОСТИКЕ ТУБЕРКУЛЕЗА»

Шаг 1

обработать кожу тампоном, смоченным 70%-м этиловым спиртом, затем другим тампоном, смоченным 1-2%-м раствором йода или другим дезинфектантом, разрешенным к применению для этих целей в установленном порядке, круговыми движениями, начиная от центра, в течение 30 с. (средняя треть предплечья);

Шаг 2

Положите шарик в лоток для использованного материала.

Шаг 3

Возьмите стерильный сухой ватный шарик. Положите его под 5 палец левой руки.

Шаг 4

Возьмите шприц в правую руку срезом иглы и шкалой вверх.

Шаг 5

Захватите кистью левой руки предплечье ребенка, и пальцами натяните кожу снизу.

Шаг 6

Введите в кожу только срез иглы, держа шприц почти параллельно коже.

Шаг 7

Зафиксируйте первым пальцем левой руки муфту иглы, прижав ее к коже.

Шаг 8

Перенесите на поршень правую руку и, надавливая на поршень введите туберкулин. Внимание! в месте инъекции должен образоваться беловатый бугорок в виде «лимонной корочки» 4-5 мм в диаметре.

Шаг 9

Извлеките иглу, не прижимая место инъекции сухим шариком

Шаг 10

Пригласить пациента через 48 – 72 ч. Для учета результатов.

«Ориентировочная агглютинация на стекле»

Шаг 1

На поверхности обезжиренного стекла карандашом на расстоянии друг от друга нарисовать 3 кружочка

Шаг 2

В 1-ый и 2-ой кружок внести по 1 капле диагностической агглютинирующей сыворотки стерильной пипеткой. В 3-ий кружок внести 1 каплю физиологического раствора

Шаг 3

Бактериологическую петлю простерилизовать над пламенем горелки, остудить, взять с поверхности агара культуру, внести в 1-ую каплю, размешать круговыми движениями.

Шаг 4

Бактериологическую петлю простерилизовать над пламенем горелки, остудить, взять с поверхности агара культуру, внести в 3-ю каплю с физиологическим, размешать круговыми движениями.

Шаг 5

Бактериологическую петлю простерилизовать, поставить в штатив.

Шаг 6

Инкубация при комнатной температуре 2-5 мин. Учет результатов. При положительном результате в 1-ой капле будет видны хлопья агглютината, вторая капля (отрицательный контроль) прозрачная, 3 3-ей капле (контроль антигена) равномерная муть.

 «Забор проб испражнений для исследований на патогенную микрофлору»

Шаг 1

Взять стерильную пробирку со средой накопления и стерильной ректальной петлей.

Шаг 2

Больного уложить на кушетку на правый бок, ноги подтянуты к животу (согнуты в коленях).

Шаг 3

Ректальную петлю вынуть из пробирки и ввести в прямую кишку вглубь на 5-8 см.

Шаг 4

Ректальную петлю осторожно вынуть из прямой кишки и опустить в пробирку со средой обогащения.

Шаг 5

Подписать пробирку: указать Ф.И.О., возраст, домашний адрес обследуемого, диагноз

  «Забор проб испражнений для исследования на дисбактериоз»

Шаг 1

Подготовить стерильную баночку с лопаточкой для забора испражнений.

Шаг 2

Непосредственно перед заборами материала (кала, испражнений) открыть баночку.

Шаг 3

Забор испражнений (не менее 1,0 грамма) производят из нескольких мест лопаточкой, которая находится в баночке.

Шаг 4

Лопаточку с фекалиями опускают в баночку, закрывают крышкой

Шаг 5

Подписать баночку: указать Ф.И.О., возраст, домашний адрес обследуемого, диагноз

 «Забор отделяемого открытых инфицированных ран для микробиологических исследований» 

Шаг 1

Кожу вокруг раны предварительно обрабатывают спиртом (70%) или другим антисептиком.

Шаг 2

Некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной салфеткой.

Шаг 3

Взятие материала (раневого отделяемого) проводится круговыми движениями стерильным тампоном от центра к периферии раны.

Шаг 4

Раневое отделяемое на тампоне асептически переносится в пробирку с транспортной средой.

Шаг 5

Подписать пробирку: указать Ф.И.О., возраст, домашний адрес обследуемого, диагноз

«Забор мочи для микробиологических исследований» 

Шаг 1

провести предварительный туалет наружных половых органов

Шаг 2

Попросить обследуемого выпустить небольшое количество мочи в мочеприемник или другую емкость

Шаг 3

Затем произвести забор средней порции свободно выпущенной мочи, в количестве 3-5 мл в стерильную посуду (полимерную банку) с плотно прикручивающейся крышкой

Шаг 4

Подписать баночку: указать Ф.И.О., возраст, домашний адрес обследуемого, диагноз

 «ПОСЕВ КРОВИ НА СТЕРИЛЬНОСТЬ» 

Шаг 1

обработать кожу тампоном, смоченным 70%-м этиловым спиртом, затем другим тампоном, смоченным 1-2%-м раствором йода или другим дезинфектантом, разрешенным к применению для этих целей в установленном порядке, круговыми движениями, начиная от центра, в течение 30 с.;

Шаг 2

Стерильным шприцем произвести венепункцию

Шаг 3

Произвести забор крови (5 мл) в шприц

Шаг 4

над пламенем спиртовки открыть флакон с двухфазной средой

Шаг 5

внести кровь во флакон из шприца, предварительно сняв иглу

Шаг 6

обжечь горлышко и пробку флакона в пламени спиртовки, закрыть флакон пробкой

Шаг 7

осторожно, чтобы не замочить пробку флакона, перемешать его содержимое круговыми движениями.


«
Выделение чистой культуры по способу Дригальского»

Шаг 1

Взять три чашки Петри с питательной средой, промаркировать 1,2,3.

Шаг 2

Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки.

Шаг 3

Стерильной бактериальной петлей взять каплю исследуемого материала.

Шаг 4

В первую чашку Петри вносят каплю материала и стерильным шпателем втирают его в поверхность питательной среды.

Шаг 5

Не прожигая шпателя и не набирая нового материала, шпатель переносят во 2-ю чашку Петри и втирают в поверхность питательной среды.

Шаг 6

Не прожигая шпателя и не набирая нового материала, шпатель переносят в 3-ю чашку Петри и втирают в поверхность питательной среды.

Шаг 7

Инкубация в термостате при 370С в течение 18-24 часов.

Шаг 8

Результат. Большее количество колоний вырастает в 1-2-й чашках, изолированные колонии – в 3-ей чашке.

«Выделение чистой культуры методом рассева в глубине среды (по Коху)»

Шаг 1

Взять три пробирки с 15 мл расплавленным мясо-пептонным агаром, 3 стерильные чашки Петри, промаркировать 1,2,3.

Шаг 2

Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки.

Шаг 3

Стерильной бактериальной петлей взять каплю исследуемого материала.

Шаг 4

В первую пробирку вносят каплю материала и вращают несколько раз, зажав между ладонями.

Шаг 5

Прокаленной и остуженной бактериальной петлей содержимого 1-й пробирки переносят во 2-ю пробирку, гомогенизируют вращательными движениями.

Шаг 6

Прокаленной и остуженной бактериальной петлей содержимого 2-й пробирки переносят в 3-ю пробирку, гомогенизируют вращательными движениями.

Шаг 7

Приготовленные разведения микробов выливают из пробирок в пронумерованные стерильные чашки Петри, соответствующим номерам пробирок.

Шаг 8

Инкубация в термостате при 370С в течение 18-24 часов.

Шаг 9

Результат. Большее количество колоний вырастает в 1-2-й чашках, изолированные колонии – в 3-ей чашке.

 «ВЫДЕЛЕНИЕ ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЫ АЭРОБОВ (1 – 2 ДЕНЬ ИССЛЕДОВАНИЯ)»

Шаг 1

Первый день: Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки, остудить, внести в пробирку с исследуемым материалом, прикоснутся кончиком петли к материалу

Шаг 2

левой рукой приоткрывают один край чашки, вводят петлю внутрь

Шаг 3

у противоположного края делают петлей несколько штрихов в одном месте

Шаг 4

петлю отрывают и засевают материал параллельными штрихами от одного края чашки к другому с интервалом 5-6 мм.

Шаг 5

Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки и поставить в штатив. Посевы инкубируют в термостате при температуре 37°С в течение 18-24 часов.

Шаг 6

Второй день: Изучение культуральных признаков: описать выросшие колонии

Шаг 7

Изучение морфологических признаков: Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки, остудить и из ½ колонии приготовить фиксированный мазок, окрасить по Граму, микроскопировать, определить форму микроорганизма и расположение бактерий, тинкториальные признаки.

Шаг 8

Выделение чистой культуры – Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки, остудить, оставшуюся ½ колонии пересеять на скошенный агар.

Шаг 9

Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки и поставить в штатив

Шаг 10

Посевы инкубируют в термостате при 37С 18 – 24ч.

 «ВЫДЕЛЕНИЕ ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЫ АЭРОБОВ (3 – 4 ДЕНЬ ИССЛЕДОВАНИЯ)»

 

Шаг 1

Третий день: Изучение чистоты, выделенной на скошенном агаре культуры: приготовить фиксированный мазок, окрасить по Граму, микроскопировать, определить форму и расположение микроорганизмов,

тинкториальные свойства.

Шаг 2

Изучение биохимических признаков: выбрать тесты для идентификации, произвести постановку этих тестов.

Шаг 3

Постановка теста на чувствительность выделенной культуры

к антибиотикам

Шаг 4

Четвертый день: Идентификация выделенной культуры: учет результатов тестов.

Шаг 5

Учет результатов определения чувствительности выделенной культуры

к антибиотикам

Шаг 6

Заполнение и выдача результата бактериологического исследования и антибиотикограммы.

 «Выделение чистой культуры анаэробов  (1-2 день исследования)»        

Шаг 1

Пробирку со средой Китта-Тароцци прогреть на кипящей водяной бане в течение 10-20 мин, охладить до 30-370С.

Шаг 2

Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки.

Шаг 3

Стерильной бактериальной петлей взять каплю исследуемого материала.

Шаг 4

Засевают в пробирку со средой Китта-Тароцци.

Шаг 5

Инкубация в анаэробных условиях: в СО2 инкубаторе, в эксикаторе или анаэростате при температуре 370С на 24-48 часов.

Шаг 6

Второй день. Просматривают посевы, при помутнении среды с придонным ростом бактерий и газообразовании приготовить мазки.

Шаг 7

Мазки окрасить по Граму, микроскопия

Шаг 8

Результат микроскопии. Под микроскопом в мазках видны крупные споровые грамположительные палочки

Шаг 9

Пересев материала с Китта-Тароцци на кровяной сахарный агар и в столбик сахарного питательного агара в пробирке, железосульфитный агар (среда Вильсон-Блера).

Шаг 10

Посевы инкубируют в анаэробных условиях: в СО2 инкубаторе, в эксикаторе или анаэростате при 370С в течение 48-72 часов.

 «Выделение чистой культуры анаэробов (3-4-й день исследования)»

Шаг 1

Просмотр выросших колоний на кровяном сахарном агаре, высоком столбике сахарного агара в пробирке и Вильсон-Блера среде после инкубации.

Шаг 2

Пересев типичных колоний на среду Китта-Тароцци или тиогликолевую среду (получение чистой культуры).

Шаг 3

Инкубация в строго анаэробных условиях в термостате при 370С в течение 24-48 часов.

Шаг 4

После инкубации идентификация чистой культуры по биохимическим признакам традиционными методами или с помощью тест-систем для определения специфических бактериальных ферментов или метаболитов.

Шаг 5

Определение продукции факторов вирулентности: серологическая идентификация экзотоксинов в реакции нейтрализации

Шаг 6

Определение чувствительности к антибиотикам в строго анаэробных условиях.

Шаг 7

Окончательный результат.

  «ОКРАСКА МАЗКА ПО ОЖЕШКО» 

Шаг 1

На нефиксированный мазок наносят 0,5 % р-р HCI и подогревают над племенем горелки в течение 1-2 мин, после чего остатки кислоты сливают

Шаг 2

Промывают водой, подсушивают и фиксируют над пламенем горелки.

Шаг 3

Препарат покрывают фильтровальной бумагой и наносят карболовый фуксин Циля. Удерживая стекло пинцетом, препарат подогревают над пламенем горелки до отхождения паров. Добавляют новую порцию красителя и подогревают еще paз.

Шаг 4

После охлаждения снимают бумагу и промывают препарат водой.

Шаг 5

Препарат обесцвечивают 5% р-ром серной кислоты, наливая кислоту на стекло.

Шаг 6

Препарат несколько раз промывают водой.

Шаг 7

Окрашивают водно-спиртовом раствором метиленового-синего в течение 3-5мин.

Шаг 8

Препарат промывают водой и высушивают, промокая фильтровальной бумагой.

Шаг 9

Нанести на мазок 1 каплю иммерсионного масла.

Шаг 10

Результат: Споры принимают ярко-красный цвет фуксина. Вегетативное тело бактерии, обесцвеченной серной кислотой, окрашивается дополнительной краской в синий цвет.

 «Определение чувствительности к антибиотикам диско-диффузионным методом»

Шаг 1

Градуированной пипеткой внести на поверхность питательной среды взвесь микроорганизмов в объеме 0,5 мл. Использованную пипетку поместить в дезинфицирующий раствор

Шаг 2

Стерильным бактериологическим шпателем распределить по поверхности агара. Использованный шпатель поместить в дезинфицирующий раствор

Шаг3

Приоткрытые чашки подсушить в течение 10 мин.

Шаг 4

Стерильным пинцетом внести диски с антибиотиками, не более 6 дисков на чашку диаметром 100 мм. Расстояние между дисками 20 мм

Шаг 5

Инкубация в термостате при 37ºС в течение 18-24 часа

Шаг 6

Учет результатов. При положительном результате вокруг диска с антибиотиком будет зона задержки роста микроорганизмов. При отрицательном результате вокруг дисков зона задержки роста микроорганизмов не будет

«Последовательность этапов выделения чистой культуры анаэробов (метод Фортнера)»

Шаг 1

Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки.

Шаг 2

Бактериальной петлей разделить среду на две половинки по середине кровяного сахарного агара

Шаг 3

Стерильной бактериальной петлей взять культуру анаэробов из среды Китта-Тароцци или каплю исследуемого материала и засевают одну половину агара.

Шаг 4

Простерилизовать бактериальную петлю, взять культуру аэробов, например кишечной палочкой (Escherichia coli) и засеять другую половину питательного агара.

Шаг 5

Засеянные чашки Петри закрывают, инкубируют в анаэробных условиях: в СО2 инкубаторе, в эксикаторе или анаэростате при температуре 370С на 24-48 часов.

Шаг 6

Второй день. Просматривают посевы, выделяют подозрительные колонии в зоне роста анаэробных бактерий.

Шаг 7

Мазки окрасить по Граму, промикроскопировать

Шаг 8

Результат. Под микроскопом в мазках видны крупные споровые грамположительные палочки

  «ПРИГОТОВЛЕНИЕ НЕФИКСИРОВАННОГО МАЗКА» 

Шаг 1

Взять обезжиренное предметное стекло. Ограничить зону мазка, нарисовав стеклографом кружок

Шаг 2

Стерильной пастеровской пипеткой нанести 1 каплю стерильного физиологического раствора на предметное стекло

Шаг 3

Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки

Шаг 4

Остуженной стерильной бактериальной петлей произвести отбор исследуемой колонии

Шаг 5

Внести отобранную колонию в физ.раствор, хорошо перемешать

Шаг 6

Простерилизовать бактериальную петлю в пламени горелки и поставить в штатив

Шаг 7

Подсушить препарат в потоке теплого воздуха над пламенем горелки.

Шаг 8

Нанести на мазок 1 каплю иммерсионного масла.

 «ПРИГОТОВЛЕНИЕ ФИКСИРОВАННОГО МАЗКА»

Шаг 1

На поверхности обезжиренного стекла карандашом нарисовать кружочек

Шаг 2

В кружок пипеткой внести 1 каплю физиологического раствора

Шаг 3

Бактериологическую петлю простерилизовать над пламенем горелки, остудить, взять с поверхности агара культуру, внести в каплю физиологического раствора, размешать круговыми движениями.

Шаг 4

Бактериологическую петлю простерилизовать, поставить в штатив.

Шаг 5

Пинцетом взять предметное стекло и просушить в теплой струе воздуха высоко над пламенем горелки.

Шаг 6

Препарат зафиксировать, опуская в пламя горелки на 1 сек. 3 раза

Шаг 7

Нанести на мазок 1 каплю иммерсионного масла, микроскопировать

 «Окраска по Граму»

Шаг 1

На мазок, фиксированный над пламенем горелки, кладут фильтровальную бумагу, пропитанную генцианвиолетом и наносят несколько капель воды. Прокрашивание 1-2 минуты.

Шаг 2

Снимают бумагу, сливают остаток красителя и, не промывая препарат водой, наливают раствор Люголя на 1-2 мин до почернения препарата.

Шаг 3

Раствор Люголя сливают. Для обесцвечивания на мазок капают несколько капель этилового спирта,  30 секунд -1 мин.

Шаг 4

Препарат тщательно промывают водопроводной водой.

Шаг 5

Препарат докрашивают водно-спиртовым раствором фуксина в течение 2 минут.

Шаг 6

Препарат тщательно промывают водопроводной водой, промокая фильтровальной бумагой.

Шаг 7

Микроскопия. На высушенный окрашенный мазок-препарат наносят каплю иммерсионного масла и смотрят под увеличением объектива 90-100.

Шаг 8

Результаты окраски. Грамположительные бактерии окрашиваются в темно-фиолетовый цвет, грамотрицательные бактерии – в ярко-малиновый цвет.

 «Окраска капсул по Бурри-Гинс»

Шаг 1

На обезжиренное предметное стекло наносят каплю туши

Шаг 2

Простерилизовать бактериальную петлю

Шаг 3

Стерильной бактериальной петлей произвести отбор исследуемой колонии

Шаг 4

Внести отобранную колонию в каплю туши, гомогенизировать

Шаг 5

Препарат высушивают на воздухе и фиксируют метиловым спиртом или смесью Никифорова.

Шаг 6

Промывают водой

Шаг 7

Окрашивают карболовым фуксином Циля, 3-5 мин

Шаг 8

Промывают водой, высушивают при комнатной температуре

Шаг 9

Микроскопия с иммерсионной системой

Шаг 10

Результаты окраски. Фон  препарата темный, микробные тела окрашиваются в красный цвет, а окруженная ее капсула не окрашиваются тушью, остаются бесцветными


«О
краска по методу Циля Нильсена»

Шаг 1

На фиксированный мазок накладывают белую фильтровальную бумагу и наливают карболовый фуксин Циля. Препарат 2-3 раза подогревают в пламени до появления паров.

Шаг 2

Препарат промывают дистиллированной водой, бумагу сбрасывают пинцетом в ванночку для отходов.

Шаг 3

Вносят пипеткой несколько капель на поверхность мазка 5% раствора серной кислоты на 2-4 сек.

Шаг 4

Промывают дистиллированной водой

Шаг 5

Вносят пипеткой несколько капель синьки Леффлера. Время окраски 3-5 минут

Шаг 6

Промывают дистиллированной водой, высушивают фильтровальной бумагой.

Шаг 7

Нанести 1 каплю иммерсионного масла, микроскопировть. Учет результатов: на голубом фоне будут видны палочковидной формы бактерии красного цвета

 

Қажетті материалды таппадың ба? Онда KazMedic авторларына тапсырыс бер

Шпоры

error: Материал көшіруге болмайды!